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    從狗的胰臟中制備粗微體

    發布時間: 2021-11-17  點擊次數: 837次

    材料與儀器

    胰臟
    HM 緩沖液 蔗糖-緩沖液 三乙基氨基乙酸緩沖液

    步驟

    1. 從動物身體切下胰臟,立即用大約 50 ml 冷 HM 緩沖液沖洗,放置于干凈的紙巾上,去除結締組織:

    勻漿介質(HM)

    0.25 mol/L 蔗糖-緩沖液A

    緩沖液A:

    50 mmol/L 三乙基氨基乙酸緩沖液(TEA),pH 7.5

    50 mmol/L KOAc

    6 mmol/L Mg (0Ac)2

    1 mmol/L EDTA

    0.5 mmol/L PMSF

    貯存液:   

    1 mol/L 三乙醇氨緩沖液,pH 7.5

    4 mol/L KOAc,pH 7.5

    1 mol/L Mg (OAc)2

    PMSF:100 mmol/L 溶于 DMSO

    2. 稱量胰臟的重量,置于干凈的玻璃盤里,用剃須刀片將其切成盡可能小的碎片。

    3. 將切碎的胰臟過組織壓碎器并在 4 倍體積的 HM 中用馬達帶動的 Potter-Elvehjem Teflon 勻漿器勻漿,將勻漿器的管子保持在冰水中。

    4. 用 Sorvall HB-4 轉頭或 SS34 轉頭在 Sorvall 冷凍離心機(DuPont Instrumcm) (最大 1000 g)中 4℃ 3200 r/min 離心 10 分鐘以去除細胞核、一些線粒體和未破碎的細胞。

    5. 在同樣的轉頭(平均 10000 g)中 4℃ 10000 r/min 離心上清(后細胞核上清)10 分鐘以去除線粒體和溶酶體。

    6. 用注射器和針頭將上清(后線粒體上清或 PMS ) 小心轉移,避免取疏松的那一層。

    7. 在 Ti60 轉頭的離心管中鋪 18 ml PMS 于 6 ml 1.3 mol/L 蔗糖-緩沖液A ( PMS 與墊層的比例大約為 3:1)上,44000 r/min ( 最大 200000 g)離心 2.5 小時。

    8. 用吸管去掉上清,包栝墊層溶液、界面的膜物質和疏松層。

    9. 用 Kimwipe 紙巾輕擦離心管的內壁,用 Dounce 勻漿器通過 2 到 3 次上下杵擊將沉淀重懸于小體積的 0.25 mol/L 蔗糖-緩沖液 B中(1 g 組織中提取的微體約用 0.5 ml 緩沖液)。

    緩沖液 B:

    50 mmol/L TEA

    1 mmol/L EDTA

    10. 取 10 μl 與 1 ml 0.1% SDS 溶液混合,測定 260 nm 和 280 nm 的光吸收值,用同樣的緩沖液將微體的濃度調節到 50 A280 nm/A280 nm 的值約為 1.9。從 1 g 組織中大約獲得 50 A280 nm 單位的粗微體。

    11. 分裝粗微體懸浮液,在液氮中冷凍并保存在 -70℃。

    12. 進一步用 EDTA 處理粗微體以增加轉運活性,用凝膠過濾來減少微體在麥胚翻譯系統中的抑制作用,或用核酸酶來降低本底。 EDTA 的處理是這樣的:

    (1) 將粗微體與等體積的 0.25 mol/L 蔗糖、50 mmol/L TEA 和 50 mmol/L EDTA 溶液混合。

    (2) 將化合物 0℃ 保溫 15 分鐘。

    (3) 在含有 0.5 mol/L 蔗糖、50 mmol/L TEA 溶液的 Ti60 離心管中鋪上保溫過的樣品(樣品與墊層的比例大約為 3:1),44000 r/min ( 最大 200000 g ) 離心 60 分鐘。

    (4) 用吸管或注射器取出上清,用干凈的 Kimwipe 紙巾輕擦離心管內壁。

    (5) 用與起始粗微體體積相等的 0.25 mol/L 蔗糖、50 mmol/L TEA 和 1 mmol/L DTT 溶液重懸沉淀,用 Dounce 勻漿器輕輕勻漿。分裝懸浮液,在液氮中冷凍并保存在 -70℃。


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